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        1. 2022-06-09 10:06:52
          慢病毒包裝

          一、 實(shí)驗(yàn)原理

          慢病毒表達(dá)載體包含了包裝、轉(zhuǎn)染、穩(wěn)定整合所需要的遺傳信息。慢病毒包裝質(zhì)??商峁┧械霓D(zhuǎn)錄、包裝、重組的假病毒載體所需要的所有輔助蛋白。為產(chǎn)生高滴度的病毒顆粒,需要利用表達(dá)載體和包裝質(zhì)粒同時(shí)共轉(zhuǎn)染細(xì)胞,在細(xì)胞中進(jìn)行病毒的包裝。包裝好的假病毒顆粒分泌到細(xì)胞外的培養(yǎng)基中。離心收集上清液后,可以直接用于宿主細(xì)胞的感染,目的基因進(jìn)入到宿主細(xì)胞之后,經(jīng)過反轉(zhuǎn)錄,整合到基因組,從而高水平的表達(dá)效應(yīng)分子。 

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          二、應(yīng)用簡介

          慢病毒(Lentivirus)載體是以HIV-1病毒為基礎(chǔ)發(fā)展起來的基因研究載體,區(qū)別于逆轉(zhuǎn)錄病毒載體,它對于分裂細(xì)胞和非分裂細(xì)胞均具有感染能力。

          實(shí)驗(yàn)平臺的慢病毒系統(tǒng)屬于第三代慢病毒系統(tǒng),生物安全性高,采用VSVG包膜,宿主范圍廣泛,慢病毒滴度高,其病毒滴度可以達(dá)到10^9TU/mL。

          目前的慢病毒載體有CMV、mCMV、CAG、PGK、UbC、EF1a、GFAP、NSE等多種啟動子可供選擇;而且還有EGFP、ZsGreen、tdTomato、mCherry、EYFP等多種熒光標(biāo)記蛋白可供選擇;抗生素篩選基因有Puromycin、Neomycin、Hygromycin等可供選擇。

          在細(xì)胞實(shí)驗(yàn)中,對于按常規(guī)方法難以轉(zhuǎn)染甚至無法轉(zhuǎn)染的細(xì)胞,通過使用病毒介導(dǎo)的方式能夠大大提高基因的轉(zhuǎn)導(dǎo)效率,達(dá)到目的基因高效表達(dá)的目的。

          具體來說,慢病毒包裝主要應(yīng)用于以下幾個(gè)方面:

          1、對于難轉(zhuǎn)染的細(xì)胞,如原代細(xì)胞、干細(xì)胞、不分化的細(xì)胞等,能大大提高目的基因轉(zhuǎn)導(dǎo)效率,而且目的基因整合到宿主細(xì)胞基因組的幾率大大增加,極大地方便了RNAi,cDNA克隆以及報(bào)告基因的研究;

          2、進(jìn)行穩(wěn)轉(zhuǎn)細(xì)胞株的篩選;

          3、為活體動物模型實(shí)驗(yàn)提供高質(zhì)量的包含目的基因的病毒液。

           

          三、 實(shí)驗(yàn)方法

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          四、樣本送檢要求

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          交付標(biāo)準(zhǔn):

          滴度:>108TU/ml

          規(guī)格:1ml

          贈送陰性對照病毒規(guī)格:0.2ml(>108TU/ml)

           

          五、案例展示 

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          六、常見問題

          1.慢病毒理論上可以包裝5~7Kbp的片段,但過大的片段包裝會影響病毒的出毒效率,導(dǎo)致獲得的病毒滴度較低,影響病毒感染效果。因此一般建議最好將包裝的片段控制在1.5Kbp以內(nèi)。  

          2.病毒載體易突變和丟失,克隆過程中可能出現(xiàn)質(zhì)粒的包裝信號突變或大小不等的片段丟失,導(dǎo)致無法成功包裝出病毒。因此建議構(gòu)建好含有目的基因的克隆載體(尤其插入片段大于1.5Kbp)后首先進(jìn)行測序,以確保關(guān)鍵序列都正確無誤。    

          3.包裝細(xì)胞多選擇為293T或293FT。要求細(xì)胞生長旺盛、狀態(tài)良好,避免過密生長和體外傳代次數(shù)過多。  

          4.轉(zhuǎn)染時(shí)對質(zhì)粒純度要求較高,最好為去掉內(nèi)毒素的超螺旋質(zhì)粒,以提高轉(zhuǎn)染效率。多采用磷酸鈣轉(zhuǎn)染方法,既節(jié)約成本又可獲得高的轉(zhuǎn)染效率(一般可達(dá)到80%~95%)。 

          5.無論是三質(zhì)?;蛩馁|(zhì)粒慢病毒系統(tǒng),轉(zhuǎn)染的各質(zhì)粒之間的比例非常重要,直接影響出毒效率。不同公司提供的質(zhì)粒有所差別,因此無法一概而論,需要根據(jù)給出的比例進(jìn)行調(diào)整優(yōu)化。

          6.轉(zhuǎn)染前,細(xì)胞密度控制在50%~60%為佳。轉(zhuǎn)染前4~8h換液,轉(zhuǎn)染后不換液。轉(zhuǎn)染第2天添加丁酸鈉(TPA)可明顯提高出毒率,之后8h再換液。每次換液前應(yīng)將培養(yǎng)基預(yù)熱至37℃,換液時(shí)動作輕柔以防細(xì)胞漂起。

          7.一般情況下,轉(zhuǎn)染48h后收獲得到的病毒顆粒最多,但也與當(dāng)時(shí)細(xì)胞狀態(tài)、生長速度和培養(yǎng)基pH值有關(guān)。收獲病毒時(shí)培養(yǎng)基應(yīng)呈紅色,若過酸呈現(xiàn)黃色則會降低病毒收獲率。  

          8.不同廠家和批次的血清對病毒的產(chǎn)量影響很大,需要篩選。 

          9.病毒液避免反復(fù)凍融,否則明顯降低效率。

          10.一般情況下,病毒液于-80℃中可保存1年,但建議半年之后重新檢測病毒滴度。

           

          七、服務(wù)流程

          【服務(wù)流程】.png

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