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2024-02-06 11:31:58
實驗干貨 | 細胞凍存與復蘇實驗指南(不看后悔!!!)

01

簡介


細胞凍存與復蘇是一種用于長期儲存細胞的技術(shù)。在這個過程中,細胞被置于低溫環(huán)境中,減緩其代謝活動。通過將細胞冷凍保存在液氮中(通常為-196℃),細胞暫時脫離生長狀態(tài),但其細胞特性得以保存。當需要時,可以通過復蘇將這些凍存的細胞重新激活,以供實驗使用。這種方法能夠適度地保存一定數(shù)量的細胞,防止細胞受到污染或其他意外事件的影響,從而發(fā)揮了細胞保種的作用。


02

原理


細胞凍存原理:

細胞凍存的原理在于降低細胞溫度至零度以下時,會引起以下變化:細胞器會脫水,細胞內(nèi)可溶性物質(zhì)濃度增加,并形成冰晶。


緩慢冷凍的過程可以逐漸使細胞脫水,以防止細胞內(nèi)形成大冰晶。因為大冰晶可能導致細胞膜和細胞器的損傷和破裂。而快速復蘇的目的是防止小冰晶再次結(jié)合成大冰晶,即防止冰晶的再結(jié)晶過程。


圖片

圖片來源網(wǎng)絡(luò)


低溫保護劑的應用原理:

1. 增加滲透壓穩(wěn)定性:在細胞凍存過程中,加入低溫保護劑可以增加細胞的滲透壓穩(wěn)定性,從而減緩細胞在慢速降溫過程中的脫水和皺縮現(xiàn)象,顯著提高了凍存效率。


2. DMSO的作用:常用的低溫保護劑是DMSO(二甲基亞砜),它是一種滲透性保護劑。DMSO能夠迅速透入細胞,并提高胞膜對水的通透性,降低冰點,延緩了凍結(jié)過程。這樣一來,細胞在凍結(jié)前會透出水分到細胞外部,在細胞外形成冰晶,從而減少了細胞內(nèi)部的冰晶形成,有效減少了冰晶對細胞的損傷。


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圖片來源網(wǎng)絡(luò)


03

實驗步驟


1

材料準備

1.儀器:凈化工作臺、離心機、恒溫水浴箱、冰箱(4℃、-20℃、-70℃)、倒置相差顯微鏡、培養(yǎng)箱、液氮冰箱。


2.玻璃器皿:吸管(彎頭、直頭)、培養(yǎng)瓶、玻璃瓶(250 ml、100 ml)、廢液缸。


3.塑料器皿:吸頭、槍頭、膠塞、移液管(10 ml)、15 ml 離心管、凍存管(1~2 ml)。


4.其他物品:微量加樣槍、紅血球計數(shù)板、記號筆、醫(yī)用橡皮膏、移液槍。


5.試劑:D-Hanks 液、小牛血清、培養(yǎng)液、雙抗(青霉素、鏈霉素)、胰蛋白酶(0.08%)、1NHCl、7.4% NaHCO3、DMSO(分析純)或無色新鮮甘油。

2

細胞凍存

1. 配制凍存培養(yǎng)液:配制含10% DMSO或甘油、10~20%小牛血清的凍存培養(yǎng)液。


2. 處理細胞:取對數(shù)生長期的細胞,使用胰蛋白酶將單層生長的細胞消化下來,對于懸浮生長的細胞,直接將細胞移至15ml離心管中。


3. 離心:進行1,000 rpm,5分鐘的離心。


4. 調(diào)整細胞密度:去除胰蛋白酶和舊的培養(yǎng)液,加入適量的配制好的凍存培養(yǎng)液。用吸管輕輕吹打使細胞均勻,然后計數(shù)并調(diào)節(jié)凍存液中細胞的最終密度為5×10^6/ml~1×10^7/ml。


5. 分裝細胞:將細胞分裝入凍存管中,每管1~1.5 ml。


6. 標記凍存管:在凍存管上標明細胞的名稱、凍存時間及操作者。


7. 凍存過程:標準的凍存程序為降溫速率-1~-2℃/min;當溫度達到-25℃以下時,可增至-5℃~-10℃/min;直到-100℃時,可迅速浸入液氮中。另一種方法是將裝有細胞的凍存管放入-20℃冰箱2小時,然后放入-70℃冰箱中過夜,最后將凍存管移入液氮容器中。


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細胞凍存步驟(圖片來源于網(wǎng)絡(luò)

3

細胞復蘇

細胞復蘇的步驟如下:


1. 取出凍存管:從液氮容器中取出凍存管,直接浸入37℃溫水中,并不時搖動,促使其盡快融化。


2. 處理細胞懸液:從37℃水浴中取出凍存管,打開蓋子,用吸管吸出細胞懸液,將其加入離心管中,并滴加10倍以上的培養(yǎng)液,然后混勻。


3. 離心:進行1,000 rpm,5分鐘的離心。


4. 調(diào)整細胞密度:棄去上清液,加入含10%小牛血清的培養(yǎng)液以重懸細胞。進行計數(shù),調(diào)整細胞密度后,將其接種到培養(yǎng)瓶中,并置于37℃培養(yǎng)箱中,靜置培養(yǎng)。


5. 繼續(xù)培養(yǎng):次日更換一次培養(yǎng)液,繼續(xù)進行培養(yǎng)。


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細胞復蘇方法(圖片來源于網(wǎng)絡(luò))


04

細胞凍存、復蘇注意事項


1. 確保細胞狀態(tài)良好:在凍存之前,確保細胞具有良好的形態(tài),并且沒有污染。


2. 選擇適合的凍存液:根據(jù)細胞類型選擇合適的凍存液,并按照相應的操作規(guī)程進行細胞的凍存。


3. 控制細胞密度:要控制好細胞的密度,避免過低或過高影響凍存效果。不同的凍存液針對不同細胞有適當?shù)膬龃婷芏确秶源_保細胞在冷凍和復蘇過程中的存活率。


4.盡快冷凍:細胞懸液加入凍存液后盡量短時間在常溫放置,因為常溫下DMSO對細胞會造成損傷。建議盡快通過程序降溫或一步法等方式進行細胞的冷凍保存。


5. 合理存放:細胞長期存放在-80℃冰箱時,建議靠冰箱內(nèi)側(cè)放置樣本,避免開關(guān)冰箱導致溫度不穩(wěn)定影響細胞保存效果。


6. 檢測存活率:細胞凍存后應取出一管進行復蘇,并檢測細胞的存活率。為穩(wěn)妥起見,可在細胞凍存半年后進行復蘇培養(yǎng),并觀察細胞生長情況后繼續(xù)凍存。


7. 溫和解凍:使用適當?shù)姆椒ń鈨黾毎?,如將凍存管放?7°C的水浴中直至完全解凍。避免使用高溫或暴露時間過長的方法,以減少DMSO對細胞的毒性作用。


8. 勻速搖晃:細胞融解過程應勻速、均一地搖晃以加速融解,同時避免流體剪切力對細胞的損傷。


9.盡快去除DMSO:已融解的凍存細胞應盡快在常溫下存放,并盡快離心去除DMSO。